Verlag des Forschungszentrums Jülich

JUEL-3626
Förster, Carola
Biochemische und molekularbiologische Charakterisierung des Riboflavintransports in Ashbya gossypii
131 S., 1999

Der filamentöse Pilz A. gossypii wird zur biotechnologischen Riboflavinproduktion eingesetzt. Ziel dieser Arbeit war es, die vorliegenden Riboflavin-Transportprozesse und die Adaptationsmechanismen an hyperosmotischen Streß zu charakterisieren und die Ergebnisse zur Konstruktion von Mutanten mit verbesserter Riboflavinexkretion zu nutzen.

Während der biotechnologischen Produktion von Riboflavin kann es zu hyperosmotischem Streß kommen, der die Riboflavinexkretion erniedrigt. Daher ist die Erforschung der vorliegenden Adaptationsmechanismen von wirtschaftlichem Interesse. A. gossypii zeichnet sich durch hohe Osmotoleranz, aber geringe Halotoleranz aus. Der Pilz adaptiert an hyperosmotischen Streß durch die Akkumulation von Polyolen, hauptsächlich von Glyzerin. Glyzerin wird über Biosynthese zur Verfügung gestellt, das Glyzerin-Aufnahmesystem wird zum Schutz gegen Verluste durch funktionelle Umkehr des Carriers unter dem Druck des auswärts gerichteten Glyzeringradienten in seiner Aktivität herunterreguliert.
Die Riboflavinaufnahme über die Plasmamembran wurde als carrier-vermittelter Transportprozess hoher Affinität aber niedriger Aktivität charakterisiert. Der Export wird über ein separates Carrier-System vermittelt. Die Exportraten steigern sich im Verlaufe der Produktion um ein Mehrfaches und betragen in der späten Produktionsphase etwa das 20fache der gemessenen Aufnahmeraten. Wiederaufnahme des sezernierten Riboflavins in die Zelle ist im Vergleich zum Export für die Netto-Exkretion vernachlässigbar. Für die Analyse der vakuolären Riboflavinspeicherung wurden zellbiologische Techniken entwickelt, die Zugang zum vakuolären Kompartiment verschafften. Hierfür wurden Methoden zur Isolierung der Organellen und zur Erstellung von Vakuolen in situ durch selektive Permeabilisierung der Plasmamembran etabliert. Außerdem wurde eine Methode zur Aufreinigung der vakuolären H+-ATPase entwickelt, um ihre Aktivität und Inhibitorsensitivität zu charakterisieren. Über Kompartimentierungssudien und kinetische Analyse der vorliegenden Riboflavinflüsse an der vakuolären Membran konnte ein dynamisches Gleichgewicht von Riboflavin zwischen Cytosol und Vakuole nachgewiesen werden. Dieses Gleichgewicht wird nach metabolischen Bedürfnissen durch aktive, ATPase-abhängige Aufnahme und energieunabhängigen Efflux von Riboflavin reguliert. Unter Inhibiton der V-ATPase mit dem spezifischen Inhibitor Concanamycin A konnte eine Umlenkung der vakuolären Riboflavinflüsse ins Kulturmedium erreicht werden. Durch Erzeugen einer V-ATPase-Defektmutante wurden neue Stämme mit dieser Eigenschaft erhalten. Die Inaktivierung der V-ATPase erzeugte einen bisher bei Pilzen nicht beschriebenen Phänotyp, der trotz dysfunktionaler Vakuole uneingeschränkt lebensfähig ist. Die VMA1-Disruptanten weisen weiterhin signifikante Riboflavinflüsse nur über die Plasmamembran auf. Sie können damit geeignet sein, den Plasmamembran-ständigen Riboflavinexporter zu isolieren, um ihn zur weiteren Verbesserung der Produktion überzuexprimieren. Als Grundlage für einen alternativen Ansatz, dessen Ziel die Umlenkung der Riboflavinflüsse durch Deletion des vakuolären Riboflavinexporters ist, wurde als Screening-System die 2-dimensionale Gelelektrophorese vakuolärer Membranproteine etabliert.


The filamentous fungus Ashbya gossypii is used for industrial riboflavin (vitamin B2 production. Biosynthesis, regulation and production parameters have been studied thoroughly in the past, resulting in weil established fermentation processes with a reported maximum yield of 15 g/l. The present work adresses now the still outstanding analysis of riboflavin transport processes in A. gossypii. On the basis of this characterization, producing strains with an improved riboflavin excretion were developed.

During fed-batch fermentation processes as well as in its natural habitat, A. gossypii frequently encounters hyperosmotic stress which leads to reduced riboflavin oversynthesis. The osmoadaptation mechanisms of A. gossypii were investigated, hereby distinguishing between halo- and osmotolerance by exposure to NaCl and mannitol stress. Growth and ultrastructure of differently treated cells were compared and the intracellular contents of compatibJe solutes and inorganic ions were quantified. Glycerol was found to be the predominant compatible solute in Ashbya gossypii, accumulation of inorganic ions could not be detected. Measurement of glycerol uptake under isosmotic conditions as weil as upon hyperosmotic stress revealed the existence of a highly active glycerol uptake system, which however was down-regulated under hyperosmotic stress. Investigation of glycerol biosynthesis by measuring glycerol-3-phosphate-dehydrogenase activity under hyperosmotic conditions indicated that accumulation of glycerol in A. gossypii is solely due to biosynthesis. Riboflavin uptake and excretion at the plasma membrane could be characterized to be mediated by two separate carrier systems. Hereby, highly active export opposes uptake of very low activity, rendering re-uptake of excreted riboflavin negligible for netto-excretion. Riboflavin production by A. gossypii starts in the late growth phase when septa are formed in the hyphae and vacuoles become visible. Vacuoles begin to pool big amounts of riboflavin. As the vacuolar compartmentation of metabolites in general plays a major role in the regulation of metabolism in fungi, determination of riboflavin fiuxes across the tonoplast was crucial for understanding riboflavin transport in A. gossypii. For this purpose, two different approaches to prepare and characterise vacuoles from the filamentous fungus were developed, i.e. the isolation of vacuoles from hyphal cells and the controlled permeabilisation of the plasma membrane. Furthermore, a purification procedure for the vacuolar H+-ATPase of A. gossypii was established to characterise its subunit composition, hydrolytic activity and sensitivity against specific inhibitors. Using these cell biological tools, dependence of vacuolar riboflavin accumulation on the activity of the V-ATPase could be proven. By transport assays, dynamic compartmentation of riboflavin between cytosol and vacuole was shown to be based on active, A TPase-dependent accumulation and an energy-independent efflux mechanism. By inhibition of the V-ATPase with the specific inhibitor concanamycin A, effective redirection of vacuolar riboflavin contents into the growth medium was achieved. In order to construct new strains with impaired vacuolar riboflavin accumulation, the vacuolar ATPase subunit A structural gene VMA1 of A. gossypii was cloned and disrupted. Cloning was achieved by PCR using degenerated oligonucleotide primers derived form conserved sequences of the Vma1 proteins from yeast and filamentous fungi. Disruption of the Ag VMA 1 gene led to complete excretion of riboflavin into the medium instead of retention in the vacuolar compartment, as observed under concanamycin A inhibition. Interestingly, in cantrast to S. cerevisiae where disruption of the VMA 1 gene is conditionally lethai and to N. crassa, where viable disruptants could not been isolated, disruption of the VMA 1 gene in A. gassypii did not cause a lethai phenotype.
The new disruptant strains only show significant riboflavin transmembrane fiuxes via the plasma membrane export carrier system. They could therefore be apt for screening on the plasma membrane export carrier to achieve further improvement of riboflavin excretion in the future. As an alternative strategy to impair vacuolar riboflavin accumulation, the 2- dimensional separation of vacuolar membrane proteins via 2-D-gelelektrophoresis was established as a screening method on the vacuolar riboflavin uptake protein via spot matching analysis between strains which differ in their vacuolar riboflavin accumulation.

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Letzte Änderung: 07.06.2022